Système de microscopie multiphotonique à cadence vidéo (VMS)
Microscope multiphotonique modulaire optimisé pour les expériences in vivo
Parlez-nous de votre application
Des cellules myéloïdes (vert, AlexaFluor647-anti-Ly6G) sont observées près du nerf optique dans la rétine d’une souris après induction d’une inflammation. Le contraste entre le système vasculaire et la surface rétinienne (bleu) a été obtenu par réflectance.
Des cellules myéloïdes (vert, AlexaFluor647-anti-Ly6G) sont observées dans les vaisseaux de la pie-mère des méninges d’une souris dans un modèle de méningite. Le système vasculaire (rouge) a été marqué avec du FITC-dextran 500 kDa.
Les vidéos ont été acquises au moyen d’un système de microscopie multiphotonique à cadence vidéo utilisant un scanneur polygonal. Offertes par Clemens Alt Ph. D., Jean Carlos Cruz Hernandez Ph. D. et Charles P. Lin Ph. D., MGH Center for Systems Biology, Université Harvard.
Les vidéos ont été acquises au moyen d’un système de microscopie multiphotonique à cadence vidéo utilisant un scanneur polygonal. Offertes par Clemens Alt Ph. D., Jean Carlos Cruz Hernandez Ph. D. et Charles P. Lin Ph. D., MGH Center for Systems Biology, Université Harvard.
Haute qualité
Optimisez l’équilibre entre la vitesse d’acquisition et le rapport signal sur bruit
Le VMS est doté d’un scanneur polygonal à haute vitesse dont la fréquence de balayage est ajustable de 9 kHz à 18 kHz, ce qui permet de régler la vitesse d’acquisition de 15 à 30 images par seconde. Pour chaque expérience, vous saurez trouver l’équilibre optimal entre le rapport signal sur bruit et la résolution temporelle.
La linéarité précise du scanneur polygonal permet de passer plus de temps sur chaque pixel (dwell time), de recueillir plus de photons et d’obtenir un rapport signal sur bruit plus élevé.
Haute vitesse
Explorez un large éventail d’applications
Avec sa vitesse de 32 à 2000 images par seconde (1024 x 512 et 1024 x 6, respectivement), le VMS est idéal pour l’imagerie calcique, le comportement des matériaux cellulaires sous sollicitations dynamiques, la migration sous flux et l’optogénétique. Sa technologie prend également en charge les techniques sans marquage, notamment la diffusion Raman anti-Stokes cohérente (CARS) et la génération de deuxième et de troisième harmonique (SHG et THG).
Imagerie in vivo de cellules microgliales de souris marquées à la GFP (vert) et de myéline (bleu, réflectance) avant (gauche) et après (droite) une lésion laser (en rouge). Vidéo : 30 minutes. Offerte par le Dr Yves De Koninck, Centre de recherche CERVO, Université Laval.
Haute flexibilité
Tirez parti des propriétés 2P pour contrôler précisément les emplacements de la photostimulation en 3D avec faible phototoxicité
Ce n’est pas tout : la direction et la vitesse du scanneur polygonal étant uniformes, vous obtiendrez une synchronisation très précise des événements de détection et de stimulation pendant la prise d’image.
GCaMP6s dans les neurones des ganglions de la racine dorsale (DRG) de la souris après une stimulation de la patte. Échelle : 50 um. Offerte par le Dr Daniel C. Côté et le Dr Yves De Koninck, Centre de recherche CERVO, Université Laval.
Haute modularité
Personnalisez votre VMS grâce à notre gamme de modules et d’options
Nos systèmes sont entièrement configurables. Vous pouvez y ajouter nos modules brevetés de super-résolution, d’imagerie volumétrique et de sectionnement optique. De nombreuses options s’offrent également à vous : photo-stimulation, imagerie confocale (1P), FLIM, PLIM, détecteurs de phospho-arséniure de gallium (GaAsP), cadres de stéréotaxie, et bien plus encore.
Spécifications
GÉNÉRAL | |
| Statifs | Droit, inversé et ouvert (Open-stand) |
| 2P objectives | - 16X (NA 0.8, WD 3mm) - 20X (NA 1.0, WD 2mm) - 25X (NA 1.10, WD 2mm) - 40X* (NA 0.8, WD 3.3mm) - 60X* (NA 1.0, WD 2mm) * Veuillez noter que ces objectifs ont une ouverture arrière plus petite et ne peuvent pas être utilisés avec nos modules AXICON et SLAM |
| Porte-objectifs | - Position simple (M25 x 0.75 ou M32 x 0.75) - Porte-objectif double conçu pour accueillir un objectif optimisé pour le 2P (M25 ou M32) et un objectif standard (RMS). Idéal pour combiner l'imagerie 2P et l'électrophysiologie |
EXCITATION | |
| Méthode de balayage | Scanneur polygonal à 36 facettes combiné à un miroir galvanométrique |
| Vitesse du scanneur polygonal | Modulation de la vitesse du scanneur polygonal de 9KHz à 18KHz ; temps d'arrêt réglable par pixel de 100ns/px à 50ns/px. 32 images par seconde à 1024 x 512 jusqu'à 2000 images par seconde à 1024 x 6, Maximum: 1024 x 1024 |
| Polygonal scanneur speed | Zoom optique jusqu'à 8x pouvant être défini par l'utilisateur ; nombre de pixels par ligne et lignes de balayage de 6 à 1024 ; fréquence d'images pouvant aller jusqu'à 2000 images par seconde |
| Personnalisation du balayage | Zoom optique jusqu'à 8x pouvant être défini par l'utilisateur ; nombre de pixels par ligne et lignes de balayage de 6 à 1024 ; fréquence d'images pouvant aller jusqu'à 2000 images par seconde |
| Contrôle de la puissance laser | PBS et lame demi-onde, AOM et EOM |
| Imagerie par balayage linéaire * | Deuxième ensemble de galvanomètres appariés pour fournir des capacités de balayage linéaire ; balayage en point ; rotation du balayage linéaire sur 360° |
| Photostimulation * | Photostimulation visible et/ou multiphotonique ; multi points et taille de la région réglables par l'utilisateur. Choix de lasers visibles et IR |
DÉTECTION DU SIGNAL | |
| Détecteurs non descannés (2P) | Choix de 1 à 3 détecteurs : PMTs Multi-Alkali à haute sensibilité et/ou GaAsPs . Unité de détection adaptable jusqu'à 6 détecteurs |
| Réfectance descannée * | Système de détection permettant l'imagerie de contraste descannée en utilisant un APD (avalanche photodiode) |
| Détecteurs descannés pour ajout d'un module confocal * | Choix de 1 à 3 détecteurs : PMTs Multi-Alkali et/ou GaAsPs |
| Détecteurs FLIM * | 1-2 tubes photomultiplicateurs rapides très sensibles (single photon); refroidissement thermoélectrique et protection automatique contre les surcharges disponibles en option |
| Génération de deuxième et troisième harmonique (SHG, THG) * | Choix de filtres |
| Caméra * | Port de caméra standard à monture C intégré à la tête de balayage. Choix de la caméra |
ENTRÉES OPTIQUES | |
| Lasers multiphotoniques | Parcours optique optimisé pour l'entrée de lasers multiphotoniques de 690 à 1700 nm. Intégration de 1 à 4 lasers multiphotoniques |
| Lasers visibles * | Entrées pour lasers visibles fibrés pour le sectionnement optique à champ large (SPARQ), l'ajout d'un module confocal ou la photostimulation |
| Épifluorescence * | Source de lumière Metalhalyde ou LED |
| Lumière transmise * | DIC visible ou IR ; éclairage halogène ou LED |
CONTRÔLE DE COMPOSANTES MOTORISÉES | |
| Platine motorisée (XY) | Platine motorisée en XY de type "bridge", ajustable en hauteur, déplacement 65 mm x 65 mm, résolution 20 nanomètres, vitesse 15 mm/sec |
| Focus motorisé (Z) | Déplacement de 38 mm avec incréments de ~0,1 μm |
| Moteur Piezo-Z * | Déplacement allant jusqu'à 500 μm avec incréments de 0,05 μm |
| Contrôle de la profondeur de champ de l'AXICON * | Réglage motorisé de la profondeur de champ jusqu'à 50um avec incréments de 5um, avec l'AXICON |
| Stimulation simultanée de ROIs ayant différentes tailles * | Stimulation de régions d'intérêt de 30um à 120um sélectionnables par l'utilisateur, avec incréments de 30um |
LOGICIEL ET ORDINATEUR | |
| Logiciel Nirvana de Bliq | Logiciel entièrement intégré à la tête de balayage pour une imagerie facile ; paramètres de balayage personnalisables pour l'optimisation de l'excitation de l'échantillon ; contrôle intégré de la puissance du laser et de la tension des détecteurs |
| Module X,Y,Z | Acquisition simple de plans en Z et de cartes 2D et 3D avec un nombre de plans, une taille de pas et une puissance laser déterminés par l'utilisateur |
| Module-T | Création facile de séries complexes impliquant des modules X, Y, Z et des composantes optionnelles pouvant être déclenchées |
| Photostimulation | Points et régions définis par l'utilisateur avec modulation laser synchronisée |
| Régions d'intérêt | Cartographie et tracé de l'intensité des régions définies par l'utilisateur en fonction du temps |
| Entrées/sorties de tension | Entrées et sorties de signaux pour les expériences électrophysiologiques, le contrôle des stimuli et la synchronisation avec des dispositifs externes |
| Ordinateur Apple | 4.2GHz, 64GB SDRAM, 2TB SSD, 48TB de stockage supplémentaire, moniteur 27" 5K |
MODULES UNIQUES BLIQ * | |
| Imagerie volumétrique par faisceau optique de Bessel : AXICON | Profondeur de champ définissable par l'utilisateur de 10um à 50um ; résolution latérale limitée par la diffraction. N'affecte pas la vitesse de balayage |
| Sectionnement optique rapide à champ large : SPARQ | Jusqu'à 7 lasers visibles à fibre ; vitesse jusqu'à 10 images par seconde ; caméra sCMOS 16 bits, matrice de 2048 x 2048 pixels (ou autre) |
| Super-résolution pour systèmes 2P et confocal (SLAM) | Module de super-résolution à haute vitesse jusqu'à 120 nm de résolution XY ; Vitesse de balayage 1024 x 512 @ 16 images par seconde (avec le VMS) |
| Porte-objectif double pour l'imagerie 2P et standard | Convient à un objectif optimisé pour le 2P (M25 ou M32) et un objectif standard (RMS). Chaque position dispose d'une poche DIC. Faible vibration de mouvement. Réglage facile de la parfocalité et de l'alignement XY. Aucun outil requis |
| Supports pour souris | Choix de différentes chambres stéréotaxiques pour les petits animaux : plaque de tête, barres d'oreilles et de dents, imagerie pulmonaire, tapis roulant ou sur mesure |
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